Anticorpo policlonale di coniglio Semaphorin 4A
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
SE/ICC | 1:50 - 1:200 |
IP | 1:10 - 1:100 |
Descrizione | Anticorpo policlonale di coniglio contro la Semaforina 4A |
Specificità | Riconosce i livelli endogeni della proteina Semaphorin 4A. |
Tipo di anticorpi | Anticorpo primario |
Immunogeno | KLH-peptide sintetico coniugato che comprende una sequenza all'interno della regione centrale della Semaforina 4A umana. La sequenza esatta è proprietaria. |
Purificazione | L'anticorpo è stato purificato mediante cromatografia di affinità immunogena. |
Peso Molecolare | Previsto: 83 kD; Osservato: 95 kD |
Modulo/Buffer | Liquido in 0,42% fosfato di potassio, 0,87% cloruro di sodio, pH 7,3, 30% glicerolo e 0,01% azoturo di sodio. |
Nomi alternativi | SEMAB; SEMB; Semaforina-4A; Semaforina-B; Sema B |
Simbolo del gene | SEMA4A |
Entrez Gene | 64218(Umano) |
SwissProt | Q9H3S1(Umano) |
*Numero clone, reattività, origine/host e clonalità sono reperibili nel nome del prodotto e nella sezione Caratteristiche principali sopra.

Analisi Western blot dell'espressione della Semaforina 4A nei lisati di cellule intere HEK293T (A), A549 (B), SGC7901 (C). (Dimensione della banda prevista: 83 kD; Dimensione della banda osservata: 95 kD)

Analisi immunoistochimica della colorazione con Semaforina 4A nella sezione di tessuto incorporato in paraffina fissata in formalina del cervello umano. La sezione è stata pretrattata utilizzando il recupero dell'antigene mediato dal calore con tampone di citrato di sodio (pH 6,0). La sezione è stata quindi incubata con l'anticorpo a temperatura ambiente e rilevata utilizzando un sistema polimerico compatto coniugato con HRP. DAB è stato utilizzato come cromogeno. La sezione è stata quindi controcolorata con ematossilina e montata con DPX.

Analisi immunofluorescente della colorazione con Semaforina 4A nelle cellule HeLa. Le cellule fissate in formalina-sono state permeabilizzate con Triton X-100 allo 0,1% in TBS per 5-10 minuti e bloccate con BSA-PBS al 3% per 30 minuti a temperatura ambiente. Le cellule sono state sondate con l'anticorpo primario in BSA-PBS al 3% e incubate per una notte a 4°C in una camera umidificata. Le cellule sono state lavate con PBST e incubate con un anticorpo secondario coniugato DyLight 594- (rosso) in PBS a temperatura ambiente al buio. DAPI è stato utilizzato per colorare i nuclei delle cellule (blu).

Immunoprecipitazione di Semaphorin 4A da 0,5 mg di lisato di estratto di cellule intere Jurkat, utilizzando 5 ug di anticorpo Anti-Semaphorin 4A e 50 ul di sfere magnetiche di proteina G (+). Nessun anticorpo è stato aggiunto al controllo (-). L'anticorpo è stato incubato sotto agitazione con sfere di proteina G per 10 minuti, il lisato di estratto di cellule intere Jurkat diluito in tampone RIPA è stato aggiunto a ciascun campione e incubato per altri 10 minuti sotto agitazione. Le proteine sono state eluite mediante aggiunta di 40ul di tampone di caricamento SDS e incubate per 10 minuti a 70°C; 10 ul di ciascun campione sono stati separati su un gel SDS PAGE, trasferiti su una membrana di nitrocellulosa, bloccati con BSA al 5% e analizzati con l'anticorpo Anti-Semaphorin 4A.
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