c-Jun Anticorpo policlonale di coniglio
Scheda di sicurezza
Caratteristiche principali e dettagli
- Obiettivo:
- Fonte/Ospite:
- Reattività:
- Clonalità:
- Applicazioni:
- Coniugazione:
- Stoccaggio:
-
Marca:
Dettagli del prodotto
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
SE/ICC | 1:50 - 1:200 |
IP | 1:10 - 1:100 |
FC | 1:100 - 1:300 |
Descrizione | Anticorpo policlonale di coniglio anti-c-Jun |
Specificità | Riconosce i livelli endogeni della proteina c-Jun. |
Tipo di anticorpi | Anticorpo primario |
Immunogeno | KLH-peptide sintetico coniugato che comprende una sequenza all'interno della regione centrale del c-Jun umano. La sequenza esatta è proprietaria. |
Purificazione | L'anticorpo è stato purificato mediante cromatografia di affinità immunogena. |
Peso Molecolare | Previsto: 35 kD; Osservato: 43 kD |
Modulo/Buffer | Liquido in 0,42% fosfato di potassio, 0,87% cloruro di sodio, pH 7,3, 30% glicerolo e 0,01% azoturo di sodio. |
Nomi alternativi | Fattore di trascrizione AP-1; Proteina attivatrice 1; AP1; Proto-oncogene c-Jun; V-jun omologo dell'oncogene del virus del sarcoma aviario 17; p39 |
Simbolo del gene | GIU |
Entrez Gene | 3725(Umano); 16476(Topo); 24516(Ratto) |
SwissProt | P05412(Umano); P05627(Topo); P17325(Ratto) |
*Numero clone, reattività, origine/host e clonalità sono reperibili nel nome del prodotto e nella sezione Caratteristiche principali sopra.
Analisi Western blot dell'espressione di c-Jun nei lisati di cellule intere PC3 (A), H1688 (B). (Dimensione della banda prevista: 35 kD; Dimensione della banda osservata: 43 kD)
Analisi immunoistochimica della colorazione c-Jun nella sezione di tessuto incluso in paraffina fissata in formalina di cancro al seno umano. La sezione è stata pretrattata utilizzando il recupero dell'antigene mediato dal calore con tampone di citrato di sodio (pH 6,0). La sezione è stata quindi incubata con l'anticorpo a temperatura ambiente e rilevata utilizzando un sistema polimerico compatto coniugato con HRP. DAB è stato utilizzato come cromogeno. La sezione è stata quindi controcolorata con ematossilina e montata con DPX.
Analisi immunofluorescente della colorazione c-Jun nelle cellule RAW264.7. Le cellule fissate in formalina-sono state permeabilizzate con Triton X-100 allo 0,1% in TBS per 5-10 minuti e bloccate con BSA-PBS al 3% per 30 minuti a temperatura ambiente. Le cellule sono state sondate con l'anticorpo primario in BSA-PBS al 3% e incubate per una notte a 4°C in una camera nascosta. Le cellule sono state lavate con PBST e incubate con un anticorpo secondario coniugato AREX® Fluor 488 - (verde) in PBS a temperatura ambiente al buio. Falloidina - AREX® Fluor 594 è stato utilizzato per colorare i filamenti di actina (rosso). DAPI è stato utilizzato per colorare i nuclei delle cellule (blu).
Immunoprecipitazione di c-Jun da 0,5 mg di lisato di estratto di cellule intere HEK293T, utilizzando 5 ug di anticorpo Anti-c-Jun e 50 ul di sfere magnetiche di proteina G (+). Nessun anticorpo è stato aggiunto al controllo (-). L'anticorpo è stato incubato sotto agitazione con sfere di proteina G per 10 minuti, il lisato di estratto di cellule intere HEK293T diluito in tampone RIPA è stato aggiunto a ciascun campione e incubato per altri 10 minuti sotto agitazione. Le proteine sono state eluite mediante aggiunta di 40ul di tampone di caricamento SDS e incubate per 10 minuti a 70°C; 10 ul di ciascun campione sono stati separati su un gel SDS PAGE, trasferiti su una membrana di nitrocellulosa, bloccati con BSA al 5% e analizzati con l'anticorpo Anti-c-Jun.
Analisi ChIP di cellule endoteliali umane (EA.hy926), incubate per 10 ore a 4°C. Reticolazione -(X-ChIP) utilizzando formaldeide per 10 minuti. Controllo positivo: posizione 89340150-89340297 nel cromosoma 11 (ha un sito c-Jun convalidato). Controllo negativo: introne 3 Igr5 (non contiene sito di legame c-Jun). Fase di rilevamento: PCR in tempo reale.
Domande frequenti
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