Anticorpo policlonale di coniglio AMY2B

Analisi Western blot dell'espressione di AMY2B nei lisati di cellule intere HL60 (A), CEM (B), K562 (C). (Dimensione della banda prevista: 57 kD; Dimensione della banda osservata: 68 kD)

Analisi immunoistochimica della colorazione AMY2B nella sezione di tessuto incorporato in paraffina fissata in formalina del cervello umano. La sezione è stata pretrattata utilizzando il recupero dell'antigene mediato dal calore con tampone di citrato di sodio (pH 6,0). La sezione è stata quindi incubata con l'anticorpo a temperatura ambiente e rilevata utilizzando un sistema polimerico compatto coniugato con HRP. DAB è stato utilizzato come cromogeno. La sezione è stata quindi controcolorata con ematossilina e montata con DPX.

Analisi immunofluorescente della colorazione Anti-AMY2B in 293 cellule. Le cellule fissate in formalina-sono state permeabilizzate con Triton X-100 allo 0,1% in TBS per 5-10 minuti e bloccate con BSA-PBS al 3% per 30 minuti a temperatura ambiente. Le cellule sono state sondate con l'anticorpo primario in BSA-PBS al 3% e incubate per una notte a 4°C in una camera nascosta. Le cellule sono state lavate con PBST e incubate con un anticorpo secondario coniugato AREX® Fluor 488 - (verde) in PBS a temperatura ambiente al buio. DAPI è stato utilizzato per colorare i nuclei delle cellule (blu).

Analisi citofluorimetrica delle cellule CEM utilizzando l'anticorpo Anti-AMY2B. Le cellule sono state fissate con paraformaldeide al 2% (10 minuti) e quindi permeabilizzate con metanolo al 90% per 10 minuti. Le cellule sono state incubate in albumina di siero bovino al 2% per bloccare le interazioni proteina-proteina non specifiche seguite dall'anticorpo a 37 °C per 60 minuti. L'anticorpo secondario Goat Anti-Rabbit IgG (H&L) - AREX® Fluor 488 è stato incubato a 37 °C per 40 minuti. L'anticorpo di controllo dell'isotipo (linea blu) è stato utilizzato nelle stesse condizioni.