Anticorpo policlonale di coniglio ADAM10
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
SE/ICC | 1:50 - 1:200 |
Descrizione | Anticorpo policlonale di coniglio anti-ADAM10 |
Specificità | Riconosce i livelli endogeni della proteina ADAM10. |
Tipo di anticorpi | Anticorpo primario |
Immunogeno | KLH-peptide sintetico coniugato che comprende una sequenza all'interno della regione centrale dell'ADAM10 umano. La sequenza esatta è proprietaria. |
Purificazione | L'anticorpo è stato purificato mediante cromatografia di affinità immunogena. |
Peso Molecolare | Previsto: 84 kD; Osservato: 85 kD |
Modulo/Buffer | Liquido in 0,42% fosfato di potassio, 0,87% cloruro di sodio, pH 7,3, 30% glicerolo e 0,01% azoturo di sodio. |
Nomi alternativi | KUZ; MADM; Dominio disintegrina e metalloproteinasi-contenente proteina 10; ADAMO 10; CDw156; Omologo della proteina Kuzbaniana; Disintegrina dei mammiferi - metalloproteasi; CD156c |
Simbolo del gene | ADAMO10 |
Entrez Gene | 102(Umano); 11487(Topo) |
SwissProt | O14672(Umano); O35598(Topo); Q10743(Ratto) |
*Numero clone, reattività, origine/host e clonalità sono reperibili nel nome del prodotto e nella sezione Caratteristiche principali sopra.

Analisi Western blot dell'espressione di ADAM10 nei lisati di cellule intere HepG2 (A), U87MG (B), A549 (C), SP20 (D), PC12 (E). (Dimensione della banda prevista: 84 kD; Dimensione della banda osservata: 85 kD)

Analisi immunoistochimica della colorazione ADAM10 nella sezione di tessuto incluso in paraffina fissata in formalina di cancro al seno umano. La sezione è stata pretrattata utilizzando il recupero dell'antigene mediato dal calore con tampone di citrato di sodio (pH 6,0). La sezione è stata quindi incubata con l'anticorpo a temperatura ambiente e rilevata utilizzando un sistema polimerico compatto coniugato con HRP. DAB è stato utilizzato come cromogeno. La sezione è stata quindi controcolorata con ematossilina e montata con DPX.

Analisi immunofluorescente della colorazione ADAM10 nelle cellule MCF7. Le cellule fissate in formalina-sono state permeabilizzate con Triton X-100 allo 0,1% in TBS per 5-10 minuti e bloccate con BSA-PBS al 3% per 30 minuti a temperatura ambiente. Le cellule sono state sondate con l'anticorpo primario in BSA-PBS al 3% e incubate per una notte a 4°C in una camera nascosta. Le cellule sono state lavate con PBST e incubate con un anticorpo secondario coniugato AREX® Fluor 488 - (verde) in PBS a temperatura ambiente al buio. Falloidina - AREX® Fluor 594 è stato utilizzato per colorare i filamenti di actina (rosso). DAPI è stato utilizzato per colorare i nuclei delle cellule (blu).
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