Anticuerpo policlonal de conejo PERK
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
FI/CCI | 1:100 - 1:500 |
IP | 1:10 - 1:100 |
Descripción | Anticuerpo policlonal de conejo contra PERK |
Especificidad | Reconoce niveles endógenos de proteína PERK. |
Tipo de anticuerpo | Anticuerpo primario |
Inmunógeno | Péptido sintético conjugado con KLH que abarca una secuencia dentro de la región N término de PERK humano. La secuencia exacta es propietaria. |
Purificación | El anticuerpo se purificó mediante cromatografía de afinidad de inmunógeno. |
Peso Molecular | Previsto: 125 kD; Observado: 125 kD |
Formulario/búfer | Líquido en 0,42% de fosfato de potasio, 0,87% de cloruro de sodio, pH 7,3, 30% de glicerol y 0,01% de azida de sodio. |
Nombres alternativos | PEK; GAJE; factor de iniciación de la traducción eucariota 2-alfa quinasa 3; PRKR (retículo quinasa endoplásmico similar); eIF2 pancreático-alfa quinasa; HsPEK |
Símbolo genético | EIF2AK3 |
Entrez Gene | 9451 (humano) |
SwissProt | Q9NZJ5(Humano) |
*El número de clon, la reactividad, la fuente/host y la clonalidad se pueden encontrar en la sección de características clave y nombre del producto anterior.

Análisis de transferencia Western de la expresión de PERK en lisados de células completas A549 (A), HepG2 (B). (Tamaño de banda previsto: 125 kD; Tamaño de banda observado: 125 kD)

Análisis inmunohistoquímico de la tinción PERK en una sección de tejido incluido en parafina fijado con formalina de cerebro humano. La sección se trató previamente utilizando recuperación de antígeno mediada por calor con tampón citrato de sodio (pH 6,0). Luego, la sección se incubó con el anticuerpo a temperatura ambiente y se detectó usando un sistema de polímero compacto conjugado con HRP. Se utilizó DAB como cromógeno. Luego, la sección se contratiñó con hematoxilina y se montó con DPX.

Análisis inmunofluorescente de tinción PERK en células HeLa. Las células fijadas con formalina se permeabilizaron con Triton X-100 al 0,1% en TBS durante 5-10 minutos y se bloquearon con BSA-PBS al 3% durante 30 minutos a temperatura ambiente. Las células se sondaron con el anticuerpo primario en BSA al 3%-PBS y se incubaron durante la noche a 4 °C en una cámara humidificada. Las células se lavaron con PBST y se incubaron con un anticuerpo secundario conjugado DyLight 594 (rojo) en PBS a temperatura ambiente en la oscuridad. Se utilizó DAPI para teñir los núcleos celulares (azul).

Inmunoprecipitación de PERK a partir de 0,5 mg de lisado de extracto de células enteras de Hela, utilizando 5 ug de anticuerpo Anti-PERK y 50 ul de perlas magnéticas de proteína G (+). No se añadió ningún anticuerpo al control (-). El anticuerpo se incubó bajo agitación con perlas de proteína G durante 10 minutos, se añadió a cada muestra lisado de extracto de células enteras de Hela diluido en tampón RIPA y se incubó durante 10 minutos más bajo agitación. Las proteínas se eluyeron mediante la adición de 40 ul de tampón de carga SDS y se incubaron durante 10 minutos a 70°C; Se separaron 10 ul de cada muestra en un gel SDS PAGE, se transfirieron a una membrana de nitrocelulosa, se bloquearon con BSA al 5% y se sondaron con anticuerpo Anti-PERK.
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