Anticuerpo policlonal de conejo nNOS (fosfo-S1417)
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
FI/CCI | 1:50 - 1:200 |
Descripción | Anticuerpo policlonal de conejo contra nNOS (Phospho-S1417) |
Especificidad | Reconoce niveles endógenos de proteína nNOS solo cuando está fosforilada en S1417. |
Tipo de anticuerpo | Anticuerpo primario |
Inmunógeno | Fosfopéptido sintético conjugado con KLH correspondiente a los residuos que rodean S1417 de la proteína nNOS humana. La secuencia exacta es propietaria. |
Purificación | El anticuerpo se purificó mediante cromatografía de afinidad de inmunógeno. |
Peso Molecular | Previsto: 160 kD; Observado: 160 kD |
Formulario/búfer | Líquido en 0,42% de fosfato de potasio, 0,87% de cloruro de sodio, pH 7,3, 30% de glicerol y 0,01% de azida de sodio. |
Nombres alternativos | Cerebro de óxido nítrico sintasa; SNO constitutivas; NC-NOS; NEOM tipo I; NEO neuronal; N-NOS; nNOS; Peptidil-cisteína S-nitrosilasa NOS1; bNOS |
Símbolo genético | NOS1 |
Entrez Gene | 4842 (humano); 18125 (ratón); 24598 (Rata) |
SwissProt | P29475 (Humano); Q9Z0J4(Ratón); P29476(Rata) |
*El número de clon, la reactividad, la fuente/host y la clonalidad se pueden encontrar en la sección de características clave y nombre del producto anterior.

Análisis de transferencia Western de la expresión de nNOS (Phospho-S1417) en lisados de células completas A549 (A), HEK293T (B). (Tamaño de banda previsto: 160 kD; Tamaño de banda observado: 160 kD)

Análisis inmunohistoquímico de la tinción con nNOS (Phospho-S1417) en una sección de tejido incluido en parafina fijado con formalina y cáncer de estómago humano. La sección se trató previamente utilizando recuperación de antígeno mediada por calor con tampón citrato de sodio (pH 6,0). Luego, la sección se incubó con el anticuerpo a temperatura ambiente y se detectó usando un sistema de polímero compacto conjugado con HRP. Se utilizó DAB como cromógeno. Luego, la sección se contratiñó con hematoxilina y se montó con DPX.

Análisis inmunofluorescente de tinción con nNOS (Phospho-S1417) en células HepG2. Las células fijadas con formalina se permeabilizaron con Triton X-100 al 0,1% en TBS durante 5-10 minutos y se bloquearon con BSA-PBS al 3% durante 30 minutos a temperatura ambiente. Las células se sondaron con el anticuerpo primario en BSA al 3% - PBS y se incubaron durante la noche a 4 ° C en una cámara hidificada. Las células se lavaron con PBST y se incubaron con un anticuerpo secundario conjugado AREX® Fluor 488 (verde) en PBS a temperatura ambiente en la oscuridad. Faloidina - Se utilizó AREX® Fluor 594 para teñir los filamentos de actina (rojo). Se utilizó DAPI para teñir los núcleos celulares (azul).
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