Anticuerpo policlonal de conejo NIP1
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
FI/CCI | 1:50 - 1:200 |
Descripción | Anticuerpo policlonal de conejo contra NIP1 |
Especificidad | Reconoce niveles endógenos de proteína NIP1. |
Tipo de anticuerpo | Anticuerpo primario |
Inmunógeno | Péptido sintético conjugado con KLH que abarca una secuencia dentro de la región C término de NIP1 humano. La secuencia exacta es propietaria. |
Purificación | El anticuerpo se purificó mediante cromatografía de afinidad de inmunógeno. |
Peso Molecular | Previsto: 44 kD; Observado: 41 kD |
Formulario/búfer | Líquido en 0,42% de fosfato de potasio, 0,87% de cloruro de sodio, pH 7,3, 30% de glicerol y 0,01% de azida de sodio. |
Nombres alternativos | APBA2BP; PNI1; SÍTIP2; XB51; N-terminal EF-mano calcio-proteína de unión 3; Proteína beta amiloide A4-miembro 2 de la familia A de unión-proteína de unión; Nek2-proteína interactuante 1; Proteína de unión a calcio neuronal 3; X11L-proteína de unión 51 |
Símbolo genético | NECAB3 |
Entrez Gene | 63941 (humano); 56846 (ratón) |
SwissProt | Q96P71 (Humano); Q9D6J4 (ratón) |
*El número de clon, la reactividad, la fuente/host y la clonalidad se pueden encontrar en la sección de características clave y nombre del producto anterior.

Análisis de transferencia Western de la expresión de NIP1 en lisados de células completas de pulmón de ratón (A) y riñón de ratón (B). (Tamaño de banda previsto: 44 kD; Tamaño de banda observado: 41 kD)

Análisis inmunohistoquímico de la tinción de NIP1 en una sección de tejido embebido en parafina fijado con formalina de cáncer de pulmón humano. La sección se trató previamente utilizando recuperación de antígeno mediada por calor con tampón citrato de sodio (pH 6,0). Luego, la sección se incubó con el anticuerpo a temperatura ambiente y se detectó usando un sistema de polímero compacto conjugado con HRP. Se utilizó DAB como cromógeno. Luego, la sección se contratiñó con hematoxilina y se montó con DPX.

Análisis inmunofluorescente de tinción con NIP1 en células COLO205. Las células fijadas con formalina se permeabilizaron con Triton X-100 al 0,1% en TBS durante 5-10 minutos y se bloquearon con BSA-PBS al 3% durante 30 minutos a temperatura ambiente. Las células se sondaron con el anticuerpo primario en BSA al 3%-PBS y se incubaron durante la noche a 4 °C en una cámara humidificada. Las células se lavaron con PBST y se incubaron con un anticuerpo secundario conjugado DyLight 594 (rojo) en PBS a temperatura ambiente en la oscuridad. Se utilizó DAPI para teñir los núcleos celulares (azul).
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