Anticuerpo policlonal de conejo HER2
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
FI/CCI | 1:100 - 1:500 |
Descripción | Anticuerpo policlonal de conejo contra HER2 |
Especificidad | Reconoce niveles endógenos de proteína HER2. |
Tipo de anticuerpo | Anticuerpo primario |
Inmunógeno | Péptido sintético conjugado con KLH que abarca una secuencia dentro de la región central del HER2 humano. La secuencia exacta es propietaria. |
Purificación | El anticuerpo se purificó mediante cromatografía de afinidad de inmunógeno. |
Peso Molecular | Previsto: 137 kD; Observado: 185 kD |
Formulario/búfer | Líquido en 0,42% de fosfato de potasio, 0,87% de cloruro de sodio, pH 7,3, 30% de glicerol y 0,01% de azida de sodio. |
Nombres alternativos | HER2; MLN19; NUE; LGN; Receptor tirosina-proteína quinasa erbB-2; Proteína del gen 19 del ganglio linfático metastásico; 19 millones; Proto-oncogén Neu; Proto-oncogén c-ErbB-2; Receptor de superficie celular tipo tirosina quinasa HER2; p185erbB2; CD340 |
Símbolo genético | ERBB2 |
Entrez Gene | 2064 (humano); 13866 (ratón) |
SwissProt | P04626 (Humano); P70424 (ratón); P06494 (Rata) |
*El número de clon, la reactividad, la fuente/host y la clonalidad se pueden encontrar en la sección de características clave y nombre del producto anterior.

Análisis de transferencia Western de la expresión de HER2 en lisados de células completas Jurkat (A), HepG2 (B). (Tamaño de banda previsto: 137 kD; Tamaño de banda observado: 185 kD)

Análisis inmunohistoquímico de la tinción de HER2 en una sección de tejido embebido en parafina fijado con formalina de cáncer de mama humano. La sección se trató previamente utilizando recuperación de antígeno mediada por calor con tampón citrato de sodio (pH 6,0). Luego, la sección se incubó con el anticuerpo a temperatura ambiente y se detectó usando un sistema de polímero compacto conjugado con HRP. Se utilizó DAB como cromógeno. Luego, la sección se contratiñó con hematoxilina y se montó con DPX.

Análisis inmunofluorescente de la tinción de HER2 en células HepG2. Las células fijadas con formalina se permeabilizaron con Triton X-100 al 0,1% en TBS durante 5-10 minutos y se bloquearon con BSA-PBS al 3% durante 30 minutos a temperatura ambiente. Las células se sondaron con el anticuerpo primario en BSA al 3% - PBS y se incubaron durante la noche a 4 ° C en una cámara hidificada. Las células se lavaron con PBST y se incubaron con un anticuerpo secundario conjugado DyLight 594 (rojo) en PBS a temperatura ambiente en la oscuridad. Se utilizó DAPI para teñir los núcleos celulares (azul).
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