Anticuerpo policlonal de conejo ciclofilina F
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
FI/CCI | 1:50 - 1:200 |
Descripción | Anticuerpo policlonal de conejo contra ciclofilina F |
Especificidad | Reconoce niveles endógenos de la proteína Ciclofilina F. |
Tipo de anticuerpo | Anticuerpo primario |
Inmunógeno | Péptido sintético conjugado con KLH que abarca una secuencia dentro de la región central de la ciclofilina F humana. La secuencia exacta es patentada. |
Purificación | El anticuerpo se purificó mediante cromatografía de afinidad de inmunógeno. |
Peso Molecular | Previsto: 22 kD; Observado: 22 kD |
Formulario/búfer | Líquido en 0,42% de fosfato de potasio, 0,87% de cloruro de sodio, pH 7,3, 30% de glicerol y 0,01% de azida de sodio. |
Nombres alternativos | CYP3; Peptidil-prolil cis-trans isomerasa F mitocondrial; PPIasa F; ciclofilina D; CyP-D; CypD; ciclofilina F; ciclofilina mitocondrial; CyP-M; Rotamasa F |
Símbolo genético | PPIF |
Entrez Gene | 10105 (humano); 105675 (ratón); 282819 (rata) |
SwissProt | P30405 (Humano); Q99KR7(Ratón); P29117 (Rata) |
*El número de clon, la reactividad, la fuente/host y la clonalidad se pueden encontrar en la sección de características clave y nombre del producto anterior.

Análisis de transferencia Western de la expresión de ciclofilina F en lisados de células completas A549 (A), PC12 (B), hígado de ratón (C), corazón de ratón (D), hígado de rata (E), corazón de rata (F). (Tamaño de banda previsto: 22 kD; Tamaño de banda observado: 22 kD)

Análisis inmunohistoquímico de la tinción con ciclofilina F en una sección de tejido embebido en parafina fijado con formalina de cerebro humano. La sección se trató previamente utilizando recuperación de antígeno mediada por calor con tampón citrato de sodio (pH 6,0). Luego, la sección se incubó con el anticuerpo a temperatura ambiente y se detectó usando un sistema de polímero compacto conjugado con HRP. Se utilizó DAB como cromógeno. Luego, la sección se contratiñó con hematoxilina y se montó con DPX.

Análisis inmunofluorescente de tinción con ciclofilina F en células K562. Las células fijadas con formalina se permeabilizaron con Triton X-100 al 0,1% en TBS durante 5-10 minutos y se bloquearon con BSA-PBS al 3% durante 30 minutos a temperatura ambiente. Las células se sondaron con el anticuerpo primario en BSA al 3%-PBS y se incubaron durante la noche a 4 °C en una cámara humidificada. Las células se lavaron con PBST y se incubaron con un anticuerpo secundario conjugado DyLight 594 (rojo) en PBS a temperatura ambiente en la oscuridad. Se utilizó DAPI para teñir los núcleos celulares (azul).
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