Polyklonaler Kaninchen-Antikörper Semaphorin 4A
Datenblatt
Hauptmerkmale und Details
- Ziel:
- Quelle/Host:
- Reaktivität:
- Klonalität:
- Anwendungen:
- Konjugation:
- Lagerung:
-
Marke:
Produktdetails
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
IP | 1:10 - 1:100 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Semaphorin 4A |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an Semaphorin 4A-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region von menschlichem Semaphorin 4A umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Predicted: 83 kD; Beobachtet: 95 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | SEMAB; SEMB; Semaphorin-4A; Semaphorin-B; Sema B |
Gensymbol | SEMA4A |
Entrez Gene | 64218(Human) |
SwissProt | Q9H3S1(Human) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.
Western-Blot-Analyse der Semaphorin-4A-Expression in Ganzzelllysaten von HEK293T (A), A549 (B) und SGC7901 (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 83 kD; beobachtete Bandengröße: 95 kD)
Immunhistochemische Analyse der Semaphorin 4A-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.
Immunfluoreszenzanalyse der Semaphorin 4A-Färbung in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
Immunpräzipitation von Semaphorin 4A aus 0,5 mg Jurkat-Ganzzellextrakt-Lysat unter Verwendung von 5 µg Anti-Semaphorin 4A-Antikörper und 50 µl Protein-G-Magnetkügelchen (+). Der Kontrolle (-) wurde kein Antikörper zugesetzt. Der Antikörper wurde unter Rühren mit Protein-G-Kügelchen 10 Minuten lang inkubiert, in RIPA-Puffer verdünntes Jurkat-Ganzzellextrakt-Lysat wurde zu jeder Probe gegeben und weitere 10 Minuten unter Rühren inkubiert. Die Proteine wurden durch Zugabe von 40 μl SDS-Ladepuffer eluiert und 10 Minuten lang bei 70 °C inkubiert. 10 µl jeder Probe wurden auf einem SDS-PAGE-Gel aufgetrennt, auf eine Nitrozellulosemembran übertragen, mit 5 % BSA blockiert und mit Anti-Semaphorin 4A-Antikörper sondiert.
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