Polyklonaler Kaninchen-Antikörper Rpb1 CTD
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Rpb1 CTD |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an Rpb1-CTD-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der C-term-Region des menschlichen Rpb1 CTD umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 217 kD; Beobachtet: 250 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | POLR2; DNA-gerichtete RNA-Polymerase-II-Untereinheit RPB1; RNA-Polymerase-II-Untereinheit B1; DNA-gerichtete RNA-Polymerase II-Untereinheit A; DNA-gerichtete RNA-Polymerase III größte Untereinheit; RNA-gerichtete RNA-Polymerase-II-Untereinheit RPB1 |
Gensymbol | POLR2A |
Entrez Gene | 5430 (Mensch) |
SwissProt | P24928 (Mensch); P08775(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Rpb1-CTD-Expression in Ganzzelllysaten von MCF7 (A) und MDAMB435 (B). (Vorhergesagte Bandengröße: 217 kD; beobachtete Bandengröße: 250 kD)

Immunhistochemische Analyse der Rpb1-CTD-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten bei menschlichem Dickdarmkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der Rpb1-CTD-Färbung in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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