Polyklonaler Kaninchen-Antikörper NFE2L1
WB | 1:500 - 1:2000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen NFE2L1 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an NFE2L1-Protein |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | Rekombinantes Fusionsprotein des menschlichen NFE2L1. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 81; Beobachtet: 120 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | HBZ17; NRF1; TCF11; Kernfaktor Erythroid 2 - verwandter Faktor 1; NF-E2-bezogener Faktor 1; NFE2-bezogener Faktor 1; Ortskontrollregion-Faktor 1; Kernfaktor Erythroid abgeleitet 2 wie 1; Transkriptionsfaktor 11; TCF-11; Transkriptionsfaktor HBZ17; Transkriptionsfaktor LCR-F1 |
Gensymbol | NFE2L1 |
Entrez Gene | 4779 (Mensch); 18023(Maus) |
SwissProt | Q14494 (Mensch); Q61985(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der NFE2L1-Expression in Ganzzelllysaten von Jurkat (A), PC12 (B) und Mauslunge (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 81; 84 kD; beobachtete Bandengröße: 120 kD)

Immunhistochemische Analyse der NFE2L1-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt des menschlichen Dickdarms. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der NFE2L1-Färbung in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem Alexa Fluor 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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