JIP2 Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen JIP2 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an JIP2-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der C-term-Region von menschlichem JIP2 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 87 kD; Beobachtet: 100 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | IB2; JIP2; PRKM8IPL; C-Jun-amino-terminale Kinase-interagierendes Protein 2; JIP-2; JNK-interagierendes Protein 2; Insel-Gehirn-2; IB-2; JNK MAP-Kinase-Gerüstprotein 2; Mitogen-aktivierte Proteinkinase 8-interagierendes Protein 2 |
Gensymbol | MAPK8IP2 |
Entrez Gene | 23542 (Mensch); 60597(Maus) |
SwissProt | Q13387 (Mensch); Q9ERE9(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der JIP2-Expression in Ganzzelllysaten von SHSY5Y (A), H1688 (B), Mausleber (C), Rattenleber (D), Maushoden (E) und Rattenhoden (F). (Vorhergesagte Bandengröße: 87 kD; beobachtete Bandengröße: 100 kD)

Immunhistochemische Analyse der JIP2-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der JIP2-Färbung in Raw264.7-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
FAQs
Neue Produkte
Datenblatt
