IKB epsilon (Phospho-S22) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen IKB-epsilon (Phospho-S22) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen des IKB-Epsilon-Proteins nur, wenn es an S22 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten um S22 des menschlichen IKB-Epsilon-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 52 kD; Beobachtet: 45 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | IKBE; NF-kappa-B-Inhibitor Epsilon; NF-kappa-BIE; I-kappa-B-epsilon; IkB-E; IkB-epsilon; IkappaBepsilon |
Gensymbol | NFKBIE |
Entrez Gene | 4794 (Mensch); 18037(Maus) |
SwissProt | O00221(Mensch); O54910(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der IKB-Epsilon-Expression (Phospho-S22) in Ganzzelllysaten, die mit Hela LPS (A), NIH3T3 LPS (B) und PC12 H2O2 (C) behandelt wurden. (Vorhergesagte Bandengröße: 52 kD; beobachtete Bandengröße: 45 kD)

Immunhistochemische Analyse der IKB-Epsilon (Phospho-S22)-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Prostatakrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der IKB-Epsilon (Phospho-S22)-Färbung in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
FAQs
Neue Produkte
Datenblatt
