Polyklonaler Kaninchen-Antikörper CD363
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen CD363 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an CD363-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der N-term-Region von menschlichem CD363 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 42 kD; Beobachtet: 43; 36 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | CHEDG1; EDG1; Sphingosin 1-Phosphatrezeptor 1; S1P-Rezeptor 1; S1P1; Endotheliale Differenzierung G-protein-gekoppelter Rezeptor 1; Sphingosin 1-Phosphatrezeptor Edg-1; S1P-Rezeptor Edg-1; CD363 |
Gensymbol | S1PR1 |
Entrez Gene | 1901 (Mensch); 13609(Maus); 29733(Ratte) |
SwissProt | P21453 (Mensch); O08530(Maus); P48303(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der CD363-Expression in Ganzzelllysaten von A375 (A), DLD (B), Rattenhaut (C) und Mausmuskel (D). (Vorhergesagte Bandengröße: 42 kD; beobachtete Bandengröße: 43; 36 kD)

Immunhistochemische Analyse der CD363-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der CD363-Färbung in COS7-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS 5-10 Minuten lang permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS 30 Minuten lang bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem Alexa Fluor 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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