Anticorpo monoclonal de camundongo RPS6 (C3846)

Análise de Western blot da expressão de RPS6 em lisados ​​​​de células inteiras de 293 (A), Hela (B), NIH3T3 (C), PC12 (D), cérebro de rato (E). (Tamanho de banda previsto: 28 kD; Tamanho de banda observado: 33 kD)

Análise imuno-histoquímica da coloração RPS6 em seção de tecido embebido em parafina fixada em formalina de rim humano. A seção foi pré-tratada usando recuperação antigênica mediada por calor com tampão citrato de sódio (pH 6,0). A secção foi então incubada com o anticorpo à temperatura ambiente e detectada utilizando um sistema de polímero compacto conjugado com HRP. DAB foi usado como cromógeno. A seção foi então contrastada com hematoxilina e montada com DPX.

Análise imunofluorescente da coloração RPS6 em células Hela. As células fixadas em formalina foram permeabilizadas com Triton X-100 a 0,1% em TBS durante 5-10 minutos e bloqueadas com BSA-PBS a 3% durante 30 minutos à temperatura ambiente. As células foram sondadas com o anticorpo primário em 3% de BSA - PBS e incubadas durante a noite a 4 ° C numa câmara humidificada. As células foram lavadas com PBST e incubadas com um anticorpo secundário conjugado AREX® Fluor 488 -(verde) em PBS à temperatura ambiente no escuro. Faloidina - AREX® Fluor 555 foi usado para colorir os filamentos de actina (vermelho). DAPI foi usado para corar os núcleos das células (azul).

Análise citométrica de fluxo de células Hela usando Anticorpo Anti-RPS6. As células foram fixadas com paraformaldeído a 2% (10 min) e depois permeabilizadas com metanol a 90% durante 10 min. As células foram incubadas em albumina de soro bovino a 2% para bloquear interações proteína-proteína não específicas seguidas pelo anticorpo a 37 ° C durante 60 min. O anticorpo secundário Goat Anti-Mouse IgG (H&L) - AREX® Fluor 488 foi incubado a 37 °C por 40 min. O anticorpo de controle do isotipo (linha azul) foi utilizado sob as mesmas condições.