Anticorpo Policlonal de Coelho CD256
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHQ | 1:100 - 1:200 |
SE/ICC | 1:100 - 1:500 |
Descrição | Anticorpo policlonal de coelho para CD256 |
Especificidade | Reconhece níveis endógenos de proteína CD256. |
Tipo de anticorpo | Anticorpo primário |
Imunogênio | Peptídeo sintético conjugado com KLH - abrangendo uma sequência dentro da região central do CD256 humano. A sequência exata é proprietária. |
Purificação | O anticorpo foi purificado por cromatografia de afinidade de imunogénio. |
Peso molecular | Previsto: 22; Observado: 22 kD |
Formulário/Buffer | Líquido em 0,42% de fosfato de potássio, 0,87% de cloreto de sódio, pH 7,3, 30% de glicerol e 0,01% de azida de sódio. |
Nomes alternativos | ABRIL; ALTO2; ZTNF2; Membro 13 da superfamília do ligante do fator de necrose tumoral; Um ligante indutor de proliferação; ABRIL; TNF - e ligante 2 expresso em leucócitos relacionados a APOL-; ALTO-2; ligante de morte relacionado ao TNF 1; TRDL-1; CD256 |
Símbolo Genético | TNFSF13 |
Gene Entrez | 8741(Humano); 69583 (Rato) |
SwissProt | O75888(Humano); Q9D777 (Rato) |
*Número do clone, reatividade, origem/host e clonalidade podem ser encontrados no nome do produto e na seção de recursos principais acima.

Análise de Western blot da expressão de CD256 em HEK293T (A), Hela (B), H446 (C), cérebro de camundongo (D), rim de camundongo (E), cérebro de rato (F), rim de rato (G) lisados de células inteiras. (Tamanho de banda previsto: 22; 24; 25; 27; 36 kD; Tamanho de banda observado: 22 kD)

Análise imuno-histoquímica da coloração de CD256 em seção de tecido embebido em parafina fixada em formalina de cérebro humano. A seção foi pré-tratada usando recuperação antigênica mediada por calor com tampão citrato de sódio (pH 6,0). A secção foi então incubada com o anticorpo à temperatura ambiente e detectada utilizando um sistema de polímero compacto conjugado com HRP. DAB foi usado como cromógeno. A seção foi então contrastada com hematoxilina e montada com DPX.

Análise imunofluorescente da coloração CD256 em células H9C2. As células fixadas em formalina foram permeabilizadas com Triton X-100 a 0,1% em TBS durante 5-10 minutos e bloqueadas com BSA-PBS a 3% durante 30 minutos à temperatura ambiente. As células foram sondadas com o anticorpo primário em 3% de BSA - PBS e incubadas durante a noite a 4 ° C numa câmara humidificada. As células foram lavadas com PBST e incubadas com um anticorpo secundário conjugado DyLight 594-(vermelho) em PBS à temperatura ambiente no escuro. DAPI foi usado para corar os núcleos das células (azul).
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