ZIC1/2/3 polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen ZIC1/2/3 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an ZIC1/2/3-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region von menschlichem ZIC1/2/3 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 48; Beobachtet: 50 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | ZIC1; ZIC; ZNF201; Zinkfingerprotein ZIC 1; Zinkfingerprotein 201; Zinkfingerprotein des Kleinhirns 1; ZIC2; Zinkfingerprotein ZIC 2; Zinkfingerprotein des Kleinhirns 2; ZIC3; ZNF203; Zinkfingerprotein ZIC 3; Zinkfingerprotein 203; Zinkfingerprotein des Kleinhirns 3 |
Gensymbol | ZIC1; ZIC2; ZIC3 |
Entrez Gene | 7545; 7546; 7547 (Mensch); 22771; 22773(Maus) |
SwissProt | Q15915; O95409; O60481 (Mensch); P46684; Q62520; Q62521(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der ZIC1/2/3-Expression in Ganzzelllysaten von SW480 (A), Jurkat (B) und SHSY5Y (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 48; 55; 50 kD; beobachtete Bandengröße: 50 kD)

Immunhistochemische Analyse der ZIC1/2/3-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der ZIC1/2/3-Färbung in Jurkat-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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