VEGFR2 (Phospho-Y1214) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen VEGFR2 (Phospho-Y1214) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an VEGFR2-Protein nur, wenn es an Y1214 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten um Y1214 des menschlichen VEGFR2-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 151 kD; Beobachtet: 230 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | FLK1; VEGFR2; Vaskulärer endothelialer Wachstumsfaktor-Rezeptor 2; VEGFR-2; Fetale Leberkinase 1; FLK-1; Kinase-Insert-Domänen-Rezeptor; KDR; Protein-Tyrosinkinase-Rezeptor flk-1; CD309 |
Gensymbol | KDR |
Entrez Gene | 3791 (Mensch); 25589(Ratte) |
SwissProt | P35968 (Mensch); P35918(Maus); O08775(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der VEGFR2-Expression (Phospho-Y1214) in Ganzzelllysaten von HuvEc (A) und HepG2 (B). (Vorhergesagte Bandengröße: 151 kD; beobachtete Bandengröße: 230 kD)

Immunhistochemische Analyse der VEGFR2 (Phospho-Y1214)-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten bei menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der VEGFR2 (Phospho-Y1214)-Färbung in MCF-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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