Polyklonaler Kaninchen-Antikörper Tyrosinhydroxylase (Phospho-S19).
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Tyrosinhydroxylase (Phospho-S19) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an Tyrosin-Hydroxylase-Protein nur, wenn es an S19 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten um S19 des menschlichen Tyrosin-Hydroxylase-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 58 kD; Beobachtet: 55 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | TYH; Tyrosin 3-Monooxygenase; Tyrosin-3-hydroxylase; TH |
Gensymbol | TH |
Entrez Gene | 7054 (Mensch); 21823(Maus); 25085(Ratte) |
SwissProt | P07101 (Mensch); P24529(Maus); P04177(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Tyrosinhydroxylase (Phospho-S19)-Expression in Ganzzelllysaten von Rattenhirn (A), Mäusehirn (B) und MCF7 (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 58 kD; beobachtete Bandengröße: 55 kD)

Immunhistochemische Analyse der Tyrosinhydroxylase (Phospho-S19)-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der Tyrosinhydroxylase (Phospho-S19)-Färbung in A549-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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