TIP60 Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:2000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:50 - 1:100 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen TIP60 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an TIP60-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region von menschlichem TIP60 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 58 kD; Beobachtet: 60 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | HTATIP; TIP60; Histon-Acetyltransferase KAT5; 60 kDa Tat-interaktives Protein; Tip60; Histonacetyltransferase HTATIP; HIV-1 Tat interaktives Protein; Lysin-Acetyltransferase 5; cPLA(2)-interagierendes Protein |
Gensymbol | KAT5 |
Entrez Gene | 10524 (Mensch); 81601(Maus); 192218(Ratte) |
SwissProt | Q92993 (Mensch); Q8CHK4(Maus); Q99MK2(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der TIP60-Expression in Ganzzelllysaten von Hela (A), Rattenniere (B) und Mäusehirn (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 58 kD; beobachtete Bandengröße: 60 kD)

Immunhistochemische Analyse der TIP60-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Leberkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der TIP60-Färbung in Jurkat-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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