TIE2 (Phospho-Y1108) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen TIE2 (Phospho-Y1108) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an TIE2-Protein nur, wenn es an Y1108 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten um Y1108 des menschlichen TIE2-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 125 kD; Beobachtet: 160 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | TIE2; VMCM; VMCM1; Angiopoietin-1-Rezeptor; Endotheliale Tyrosinkinase; Tunica interna-Endothelzellkinase; Tyrosinkinase mit Ig- und EGF-Homologiedomänen-2; Tyrosin-Proteinkinaserezeptor TEK; Tyrosin-Proteinkinase-Rezeptor TIE-2; hTIE2; S. 140 TEK; CD202b |
Gensymbol | TEK |
Entrez Gene | 7010 (Mensch) |
SwissProt | Q02763 (Mensch); Q02858(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der TIE2-Expression (Phospho-Y1108) in HEK293T- (A) und Hela-Ganzzelllysaten (B). (Vorhergesagte Bandengröße: 125 kD; beobachtete Bandengröße: 160 kD)

Immunhistochemische Analyse der TIE2 (Phospho-Y1108)-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Leberkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der TIE2 (Phospho-Y1108)-Färbung in HepG2-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem AREX® Fluor 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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