STAT1 (Phospho-S727) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
IP | 1:10 - 1:100 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen STAT1 (Phospho-S727) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an STAT1-Protein nur, wenn es an S727 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten um S727 des menschlichen STAT1-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 87 kD; Beobachtet: 91 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | Signalwandler und Aktivator der Transkription 1-alpha/beta; Transkriptionsfaktor ISGF-3 Komponenten p91/p84 |
Gensymbol | STAT1 |
Entrez Gene | 6772 (Mensch) |
SwissProt | P42224 (Mensch); P42225(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der STAT1 (Phospho-S727)-Expression in mit A431 (A), mit NIH3T3-Insulin behandelten (B) und mit Jurkat-Pervanadat behandelten (C) Ganzzelllysaten. (Vorhergesagte Bandengröße: 87 kD; beobachtete Bandengröße: 91 kD)

Immunhistochemische Analyse der STAT1 (Phospho-S727)-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der STAT1-Färbung (Phospho-S727) in NIH3T3-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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