Polyklonaler SRSF5-Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:2000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:50 - 1:100 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen SRSF5 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an SRSF5-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region von menschlichem SRSF5 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 31 kD; Beobachtet: 40 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | STUNDEN; SFRS5; SRP40; Serin/Arginin-reich an Spleißfaktor 5; Verzögerte-frühe Protein-HRS; Prä-mRNA-Spleißfaktor SRP40; Spleißfaktor, Arginin/Serin-reich 5 |
Gensymbol | SRSF5 |
Entrez Gene | 6430 (Mensch); 20384(Maus); 29667(Ratte) |
SwissProt | Q13243 (Mensch); O35326(Maus); Q09167(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der SRSF5-Expression in Ganzzelllysaten von Panc1 (A), HCT116 (B) und SGC7901 (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 31 kD; beobachtete Bandengröße: 40 kD)

Immunhistochemische Analyse der SRSF5-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der SRSF5-Färbung in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
FAQs
Neue Produkte
Sicherheitsdatenblatt
