SMAD3 (Phospho-S204) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen SMAD3 (Phospho-S204) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an SMAD3-Protein nur, wenn es an S204 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten um S204 des menschlichen SMAD3-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 48 kD; Beobachtet: 52 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | MADH3; Mütter gegen dekapentaplegisches Homolog 3; MAD-Homolog 3; Mad3; Mütter gegen DPP-Homolog 3; hMAD-3; JV15-2; SMAD-Familienmitglied 3; SMAD 3; Smad3; hSMAD3 |
Gensymbol | SMAD3 |
Entrez Gene | 4088 (Mensch); 17127(Maus); 25631(Ratte) |
SwissProt | P84022 (Mensch); Q8BUN5(Maus); P84025(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der SMAD3-Expression (Phospho-S204) in Ganzzelllysaten von HCT116 (A) und A549 (B). (Vorhergesagte Bandengröße: 48 kD; beobachtete Bandengröße: 52 kD)

Immunhistochemische Analyse der SMAD3 (Phospho-S204)-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der SMAD3 (Phospho-S204)-Färbung in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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