SMAD2/3 (Acetyl-K19) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper

Sicherheitsdatenblatt

SMAD2/3 (Acetyl-K19) Rabbit Polyclonal Antibody

Hauptmerkmale und Details

Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen SMAD2/3 (Acetyl-K19)

Ziel: SMAD2/3 (Acetyl-K19)
Quelle/Host: Kaninchen
Reaktivität: Mensch, Maus, Ratte, Rind, Huhn, Schwein, Zebrafisch
Klonalität: Polyklonal
Anwendungen: WB, IHC, IF/ICC
Konjugation: Unkonjugiert
Lagerung: bei -20°C

Marke:

KAT.-NR. : APA10554

US$ Bitte wählen

Größe:

50μL 100 μL

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Produktdetails

Hintergrund

Rezeptorreguliertes SMAD (R-SMAD), ein intrazellulärer Signalwandler und Transkriptionsmodulator, der durch TGF-beta (transformierender Wachstumsfaktor) und Aktivin-Typ-1-Rezeptorkinasen aktiviert wird. Bindet das TRE-Element in der Promotorregion vieler Gene, die durch TGF-beta reguliert werden, und aktiviert bei Bildung des SMAD2/SMAD4-Komplexes die Transkription. Fördert die TGFB1-vermittelte Transkription odontoblastischer Differenzierungsgene in Zahnpapillenzellen. Reguliert positiv die Aktivität der PDPK1-Kinase, indem es deren Dissoziation vom 14-3-3-Protein YWHAQ stimuliert, das als negativer Regulator fungiert.

Bewerbung

Um eine optimale Testleistung sicherzustellen, empfiehlt AREX die Durchführung einer auf jedes Testsystem zugeschnittenen Reagenzientitration, um optimale Nachweisergebnisse zu erzielen.

WB	1:500 - 1:1000
IHC	1:50 - 1:100
IF/ICC	1:50 - 1:200

*Ergebnisse sind probenspezifisch. Bitte beziehen Sie sich als Referenz auf Ihre lokalen Testbedingungen und Testparameter.

Übersicht

Beschreibung	Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen SMAD2/3 (Acetyl-K19)
Spezifität	Erkennt endogene Mengen an SMAD2/3-Protein nur, wenn es an K19 acetyliert ist.
Antikörpertyp	Primärer Antikörper
Immunogen	KLH-konjugiertes synthetisches acetyliertes Peptid, das Resten um K19 des menschlichen SMAD2/3-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt.
Reinigung	Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt.
Molekulargewicht	Voraussichtlich: 52; Beobachtet: 52 kD
Form/Puffer	Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid.
Alternative Namen	SMAD2; MADH2; MADR2; Mütter gegen dekapentaplegisches Homolog 2; MAD-Homolog 2; Mütter gegen DPP-Homolog 2; JV18-1; Mad-verwandtes Protein 2; hMAD-2; SMAD-Familienmitglied 2; SMAD 2; Smad2; hSMAD2; SMAD3; MADH3; Mütter gegen dekapentaplegisches Homolog 3; MAD-Homolog 3; Mad3; Mütter gegen DPP-Homolog 3; hMAD-3; JV15-2; SMAD-Familienmitglied 3; SMAD 3; Smad3; hSMAD3
Gensymbol	SMAD2; SMAD3
Entrez Gene	4087; 4088 (Mensch); 17126; 17127(Maus); 29357; 25631(Ratte)
SwissProt	Q15796; P84022 (Mensch); Q62432; Q8BUN5(Maus); O70436; P84025(Ratte)

*AREX optimiert unsere Produkte kontinuierlich. Der Inhalt der Webseite spiegelt möglicherweise nicht die neuesten Aktualisierungen wider. Für Anfragen wenden Sie sich bitte an info@arexbio.com oder Ihren lokalen Händler.
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Daten

Western-Blot-Analyse der SMAD2/3-Expression (Acetyl-K19) in Zebrafisch-Ganzzelllysaten (A). (Vorhergesagte Bandengröße: 52; 48 kD; beobachtete Bandengröße: 52 kD)

Immunhistochemische Analyse der SMAD2/3 (Acetyl-K19)-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der SMAD2/3 (Acetyl-K19)-Färbung in 22RV1-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem AREX® Fluor 488 -konjugierten Sekundärantikörper (grün) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Phalloidin - AREX® Fluor 594 wurde zum Färben von Aktinfilamenten (rot) verwendet. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.

Lagerung

Kurzfristig bei 4°C lagern. Bei längerer Lagerung bei -20 °C lagern und Einfrier-/Auftauzyklen vermeiden.

Hinweis

Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung in diagnostischen Verfahren geeignet.

FAQs

Was sind die wichtigsten Arten von Forschungsantikörpern und wie unterscheiden sie sich?

Forschungsantikörper werden hauptsächlich in monoklonale Antikörper und polyklonale Antikörper unterteilt. Monoklonale Antikörper bieten in der Regel eine höhere Spezifität und eine bessere Chargenkonsistenz, während polyklonale Antikörper oft eine stärkere Affinität bieten, aber möglicherweise größere Unterschiede zwischen den Chargen aufweisen. Die Wahl hängt von Ihren spezifischen experimentellen Anforderungen ab.

Wie kann ich feststellen, ob ein Forschungsantikörper für mein Experiment geeignet ist?

Es wird empfohlen, das Produktdatenblatt sorgfältig auf validierte Anwendungen, Speziesreaktivität, empfohlene Verdünnungen und veröffentlichte Referenzen zu prüfen. Bei neuen Antikörpern ist in der Regel die Durchführung einer Validierung im kleinen Maßstab mit positiven Kontrollproben hilfreich.

Kann eine unsachgemäße Lagerung von Forschungsantikörpern die Versuchsergebnisse beeinflussen?

Ja. Antikörper reagieren empfindlich auf Temperatur, wiederholte Einfrier-/Auftauzyklen und Kontamination. Eine unsachgemäße Lagerung kann zu verminderter Aktivität, erhöhtem Hintergrund oder schwächeren Signalen führen. Befolgen Sie am besten die Lagerungshinweise im Produktdatenblatt.

Warum funktioniert die im Datenblatt empfohlene Verdünnung in meinem Experiment nicht?

Die empfohlene Verdünnung richtet sich nach den Testbedingungen des Lieferanten. Faktoren wie Probentyp, Fixierungsmethode und Nachweissystem in Ihrem Labor können die optimale Arbeitskonzentration beeinflussen. Oft ist es notwendig, eine Verdünnungsreihenoptimierung im eigenen System durchzuführen.

Welche Vorsichtsmaßnahmen sollte ich treffen, wenn ich einen neu erworbenen Forschungsantikörper zum ersten Mal verwende?

Es empfiehlt sich, den Antikörper (insbesondere konzentrierte oder lyophilisierte) kurz zu zentrifugieren und anschließend einen kleinen Pilotversuch unter den empfohlenen Bedingungen durchzuführen. Auch die Aufzeichnung der Chargennummer und des Verwendungsdatums ist für die zukünftige Nachverfolgung hilfreich.

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