SHPTP1 (Phospho-Y536) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen SHPTP1 (Phospho-Y536) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an SHPTP1-Protein nur, wenn es an Y536 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten um Y536 des menschlichen SHPTP1-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 67 kD; Beobachtet: 68 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | HCP; PTP1C; Tyrosin-Proteinphosphatase-Nichtrezeptor Typ 6; Hämatopoetisches Zellprotein-Tyrosinphosphatase; Protein-Tyrosinphosphatase 1C; PTP-1C; Protein-Tyrosinphosphatase SHP-1; SH-PTP1 |
Gensymbol | PTPN6 |
Entrez Gene | 5777 (Mensch); 15170(Maus); 116689(Ratte) |
SwissProt | P29350 (Mensch); P29351(Maus); P81718(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der SHPTP1 (Phospho-Y536)-Expression in Ganzzelllysaten von K562 (A), Jurkat (B), NIH3T3 (C) und Raw264.7 (D). (Vorhergesagte Bandengröße: 67 kD; beobachtete Bandengröße: 68 kD)

Immunhistochemische Analyse der SHPTP1 (Phospho-Y536)-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der SHPTP1 (Phospho-Y536)-Färbung in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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