Polyklonaler Ryanodin-Rezeptor-2-Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Ryanodin-Rezeptor 2 |
Spezifität | Erkennt endogene Spiegel des Ryanodin-Rezeptor-2-Proteins. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region des menschlichen Ryanodin-Rezeptors 2 umfasst. Die genaue Sequenz ist geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 564 kD; Beobachtet: 564 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | Ryanodin-Rezeptor 2; RYR-2; RyR2; hRYR-2; Herzmuskel-Ryanodin-Rezeptor; Herzmuskel-Ryanodinrezeptor-Kalziumfreisetzungskanal; Ryanodinrezeptor Typ 2 |
Gensymbol | RYR2 |
Entrez Gene | 6262 (Mensch); 20191(Maus); 689560(Ratte) |
SwissProt | Q92736 (Mensch); E9Q401(Maus); B0LPN4(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Ryanodin-Rezeptor-2-Expression in Ganzzelllysaten von PC3 (A), MCF7 (B), NIH3T3 (C) und Mäusehirn (D). (Vorhergesagte Bandengröße: 564 kD; beobachtete Bandengröße: 564 kD)

Immunhistochemische Analyse der Ryanodin-Rezeptor-2-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der Ryanodin-Rezeptor-2-Färbung in NIH-3T3-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem AREX® Fluor 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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