Polyklonaler Kaninchen-Antikörper RRM2
Sicherheitsdatenblatt
Hauptmerkmale und Details
- Ziel:
- Quelle/Host:
- Reaktivität:
- Klonalität:
- Anwendungen:
- Konjugation:
- Lagerung:
-
Marke:
Produktdetails
WB | 1:500 - 1:2000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:10 - 1:100 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen RRM2 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an RRM2-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | Rekombinantes Fusionsprotein von menschlichem RRM2 |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 44; Beobachtet: 45 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | RR2; Ribonukleosid-Diphosphatreduktase-Untereinheit M2; Kleine Kette der Ribonukleotidreduktase; Kleine Untereinheit der Ribonukleotidreduktase |
Gensymbol | RRM2 |
Entrez Gene | 6241 (Mensch); 20135(Maus); 362720(Ratte) |
SwissProt | P31350 (Mensch); P11157(Maus); Q4KLN6(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.
Western-Blot-Analyse der RRM2-Expression in Ganzzelllysaten von MCF7 (A), Hela (B), Jurakt (C) und Mausthymus (D). (Vorhergesagte Bandengröße: 44; 51 kD; beobachtete Bandengröße: 45 kD)
Immunhistochemische Analyse der RRM2-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt des Rattenherzens. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.
Immunfluoreszenzanalyse der RRM2-Färbung in Hela-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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