Polyklonaler Kaninchen-Antikörper RhoBTB1
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen RhoBTB1 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an RhoBTB1-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der N-term-Region von menschlichem RhoBTB1 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 79; Beobachtet: 79 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | RHOBTB1; KIAA0740; Rho-verwandte BTB-Domäne-enthaltend Protein 1; RHOBTB2; DBC2; KIAA0717; Rho-verwandte BTB-Domäne-enthaltend Protein 2; Im Brustkrebs-2-Genprotein gelöscht; S. 83 |
Gensymbol | RHOBTB1; RHOBTB2 |
Entrez Gene | 23221; 9886 (Mensch); 69288; 246710(Maus) |
SwissProt | O94844; Q9BYZ6 (Mensch); Q9DAK3; Q91V93(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der RhoBTB1-Expression in Ganzzelllysaten von CT26 (A), C6 (B), HEK293T (C), SGC7901 (D) und U87MG (E). (Vorhergesagte Bandengröße: 79; 82 kD; beobachtete Bandengröße: 79 kD)

Immunhistochemische Analyse der RhoBTB1-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der RhoBTB1-Färbung in A549-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem Alexa Fluor 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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