Polyklonaler Kaninchen-Antikörper PSMB8
WB | 1:500 - 1:2000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen PSMB8 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an PSMB8-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | Rekombinantes Fusionsprotein von menschlichem PSMB8 |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 29; Beobachtet: 23-28 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | LMP7; PSMB5i; RING10; Y2; Proteasom-Untereinheit Beta-Typ-8; Niedermolekulares Protein 7; Macropain-Untereinheit C13; Multikatalytische Endopeptidase-Komplex-Untereinheit C13; Proteasom-Komponente C13; Proteasom-Untereinheit beta-5i; Wirklich interessantes neues Gen-10-Protein |
Gensymbol | PSMB8 |
Entrez Gene | 5696 (Mensch) |
SwissProt | P28062 (Mensch) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der PSMB8-Expression in Ganzzelllysaten von HepG2 (A), HL60 (B), Mäuseleber (C) und Mäusemilz (D). (Vorhergesagte Bandengröße: 29; 30 kD; beobachtete Bandengröße: 23-28 kD)

Immunhistochemische Analyse der PSMB8-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt des Rattenherzens. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der PSMB8-Färbung in A549-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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