PKC theta (Phospho-S676) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen PKC theta (Phospho-S676) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an PKC-Theta-Protein nur, wenn es bei S676 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten um S676 des menschlichen PKC-Theta-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 81 kD; Beobachtet: 80 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | PRKCT; Proteinkinase C-Theta-Typ; nPKC-theta |
Gensymbol | PRKCQ |
Entrez Gene | 5588 (Mensch); 18761(Maus) |
SwissProt | Q04759 (Mensch); Q02111(Maus); Q9WTQ0(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der PKC-Theta-Expression (Phospho-S676) in HeLa-UV-behandelten (A), SP2/0-UV-behandelten (B) und PC12-UV-behandelten (C) Ganzzelllysaten. (Vorhergesagte Bandengröße: 81 kD; beobachtete Bandengröße: 80 kD)

Immunhistochemische Analyse der PKC-Theta-Färbung (Phospho-S676) in einem formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt mit menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der PKC-Theta-Färbung (Phospho-S676) in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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