PKC iota/zeta Kaninchen Polyklonaler Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen PKC iota/zeta |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an PKC-Iota/Zeta-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region des menschlichen PKC iota/zeta umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 68; Beobachtet: 78 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | DXS1179E; Proteinkinase C-Iota-Typ; Atypische Proteinkinase C-lambda/iota; PRKC-lambda/iota; aPKC-lambda/iota; nPKC-iota; PKC2; Proteinkinase C-Zeta-Typ; nPKC-zeta |
Gensymbol | PRKCI; PRKCZ |
Entrez Gene | 5584; 5590 (Mensch); 18759; 18762(Maus); 84006; 25522(Ratte) |
SwissProt | P41743; Q05513 (Mensch); Q62074; Q02956(Maus); F1M7Y5; P09217(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der PKC-iota/zeta-Expression in Ganzzelllysaten von MCF7 (A), NIH3T3 (B), Mäuseniere (C) und Rattenniere (D). (Vorhergesagte Bandengröße: 68; 67 kD; beobachtete Bandengröße: 78 kD)

Immunhistochemische Analyse der PKC-Iota/Zeta-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der PKC-Iota/Zeta-Färbung in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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