PAR2 Polyklonaler Kaninchen-Antikörper

Sicherheitsdatenblatt

Hauptmerkmale und Details

Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen PAR2

Ziel: PAR2
Quelle/Host: Kaninchen
Reaktivität: Mensch, Maus, Ratte
Klonalität: Polyklonal
Anwendungen: WB, IHC, IF/ICC
Konjugation: Unkonjugiert
Lagerung: bei -20°C

Marke:

KAT.-NR. : APA15585

US$ Bitte wählen

Größe:

50μL 100 μL

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Produktdetails

Hintergrund

Rezeptor für Trypsin und trypsinähnliche Enzyme, gekoppelt an G-Proteine. Seine Funktion wird durch die Aktivierung mehrerer Signalwege vermittelt, darunter Phospholipase C (PLC), intrazelluläres Kalzium, Mitogen-aktivierte Proteinkinase (MAPK), I-kappaB-Kinase/NF-kappaB und Rho. Kann auch durch gespaltenes F2R/PAR1 transaktiviert werden. Beteiligt sich an der Modulation von Entzündungsreaktionen und der Regulierung der angeborenen und adaptiven Immunität und fungiert als Sensor für proteolytische Enzyme, die während einer Infektion entstehen. Generell ist es entzündungsfördernd. Kann bei Entzündungsreaktionen synergistisch mit TLR4 und wahrscheinlich TLR2 signalisieren und moduliert die TLR3-Signalübertragung. Hat eine schützende Rolle beim Aufbau der Endothelbarriere; an der Aktivität ist der Gerinnungsfaktor X beteiligt.

Bewerbung

Um eine optimale Testleistung sicherzustellen, empfiehlt AREX die Durchführung einer auf jedes Testsystem zugeschnittenen Reagenzientitration, um optimale Nachweisergebnisse zu erzielen.

WB	1:500 - 1:2000
IHC	1:50 - 1:200
IF/ICC	1:50 - 1:200

*Ergebnisse sind probenspezifisch. Bitte beziehen Sie sich als Referenz auf Ihre lokalen Testbedingungen und Testparameter.

Übersicht

Beschreibung	Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen PAR2
Spezifität	Erkennt endogene Mengen an PAR2-Protein
Antikörpertyp	Primärer Antikörper
Immunogen	Rekombinantes Fusionsprotein von menschlichem PAR2. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt.
Reinigung	Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt.
Molekulargewicht	Voraussichtlich: 44 kD; Beobachtet: 55 kD
Form/Puffer	Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid.
Alternative Namen	GPR11; PAR2; Proteinase-aktivierter Rezeptor 2; PAR-2; Gerinnungsfaktor-II-Rezeptor-wie 1; G-protein-gekoppelter Rezeptor 11; Thrombinrezeptor-wie 1
Gensymbol	F2RL1
Entrez Gene	2150 (Mensch); 14063(Maus); 116677(Ratte)
SwissProt	P55085 (Mensch); P55086(Maus); Q63645(Ratte)

*AREX optimiert unsere Produkte kontinuierlich. Der Inhalt der Webseite spiegelt möglicherweise nicht die neuesten Aktualisierungen wider. Für Anfragen wenden Sie sich bitte an info@arexbio.com oder Ihren lokalen Händler.
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Daten

Western-Blot-Analyse der PAR2-Expression in Ganzzelllysaten von SKOV3 (A) und HT29 (B). (Vorhergesagte Bandengröße: 44 kD; beobachtete Bandengröße: 55 kD)

Immunhistochemische Analyse der PAR2-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten menschlichen Nierengewebeschnitt. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der PAR2-Färbung in HepG2-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem AREX® Fluor 488 -konjugierten Sekundärantikörper (grün) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Phalloidin - AREX® Fluor 594 wurde zum Färben von Aktinfilamenten (rot) verwendet. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.

Lagerung

Kurzfristig bei 4°C lagern. Bei längerer Lagerung bei -20 °C lagern und Einfrier-/Auftauzyklen vermeiden.

Hinweis

Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung in diagnostischen Verfahren geeignet.

FAQs

Was sind die wichtigsten Arten von Forschungsantikörpern und wie unterscheiden sie sich?

Forschungsantikörper werden hauptsächlich in monoklonale Antikörper und polyklonale Antikörper unterteilt. Monoklonale Antikörper bieten in der Regel eine höhere Spezifität und eine bessere Chargenkonsistenz, während polyklonale Antikörper oft eine stärkere Affinität bieten, aber möglicherweise größere Unterschiede zwischen den Chargen aufweisen. Die Wahl hängt von Ihren spezifischen experimentellen Anforderungen ab.

Wie kann ich feststellen, ob ein Forschungsantikörper für mein Experiment geeignet ist?

Es wird empfohlen, das Produktdatenblatt sorgfältig auf validierte Anwendungen, Speziesreaktivität, empfohlene Verdünnungen und veröffentlichte Referenzen zu prüfen. Bei neuen Antikörpern ist in der Regel die Durchführung einer Validierung im kleinen Maßstab mit positiven Kontrollproben hilfreich.

Kann eine unsachgemäße Lagerung von Forschungsantikörpern die Versuchsergebnisse beeinflussen?

Ja. Antikörper reagieren empfindlich auf Temperatur, wiederholte Einfrier-/Auftauzyklen und Kontamination. Eine unsachgemäße Lagerung kann zu verminderter Aktivität, erhöhtem Hintergrund oder schwächeren Signalen führen. Befolgen Sie am besten die Lagerungshinweise im Produktdatenblatt.

Warum funktioniert die im Datenblatt empfohlene Verdünnung in meinem Experiment nicht?

Die empfohlene Verdünnung richtet sich nach den Testbedingungen des Lieferanten. Faktoren wie Probentyp, Fixierungsmethode und Nachweissystem in Ihrem Labor können die optimale Arbeitskonzentration beeinflussen. Oft ist es notwendig, eine Verdünnungsreihenoptimierung im eigenen System durchzuführen.

Welche Vorsichtsmaßnahmen sollte ich treffen, wenn ich einen neu erworbenen Forschungsantikörper zum ersten Mal verwende?

Es empfiehlt sich, den Antikörper (insbesondere konzentrierte oder lyophilisierte) kurz zu zentrifugieren und anschließend einen kleinen Pilotversuch unter den empfohlenen Bedingungen durchzuführen. Auch die Aufzeichnung der Chargennummer und des Verwendungsdatums ist für die zukünftige Nachverfolgung hilfreich.

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