NF-kappaB p65 (Phospho-S311) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen NF-kappaB p65 (Phospho-S311) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen des NF-kappaB p65-Proteins nur, wenn es an S311 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten um S311 des menschlichen NF-kappaB p65-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 60 kD; Beobachtet: 75 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | NFKB3; Transkriptionsfaktor p65; Kernfaktor NF-kappa-B p65-Untereinheit; Kernfaktor des Kappa-Light-Polypeptid-Gen-Enhancers in B-cells 3 |
Gensymbol | RELA |
Entrez Gene | 5970 (Mensch); 19697(Maus) |
SwissProt | Q04206 (Mensch); Q04207(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der NF-kappaB p65 (Phospho-S311)-Expression in HeLa TNFa-behandelten (A), Mäusenieren- (B) und PC12 UV-behandelten (C) Ganzzelllysaten. (Vorhergesagte Bandengröße: 60 kD; beobachtete Bandengröße: 75 kD)

Immunhistochemische Analyse der NF-kappaB p65 (Phospho-S311)-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der NF-kappaB p65 (Phospho-S311)-Färbung in PC12-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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