NF-kappaB p100 polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
IP | 1:10 - 1:100 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen NF-kappaB p100 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen des NF-kappaB p100-Proteins. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der C-term-Region von menschlichem NF-kappaB p100 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 96 kD; Beobachtet: 100 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | LYT10; Kernfaktor NF-kappa-B p100-Untereinheit; DNA-Bindungsfaktor KBF2; H2TF1; Lymphozyten-Translokations-Chromosom-10-Protein; Kernfaktor des Kappa-Light-Polypeptid-Gen-Enhancers in B-cells 2; Oncogene Lyt-10; Lyt10 |
Gensymbol | NFKB2 |
Entrez Gene | 4791 (Mensch); 18034(Maus) |
SwissProt | Q00653 (Mensch); Q9WTK5(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der NF-kappaB p100-Expression in Ganzzelllysaten von HEK293T (A) und Mäuseleber (B). (Vorhergesagte Bandengröße: 96 kD; beobachtete Bandengröße: 100 kD)

Immunhistochemische Analyse der NF-kappaB p100-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der NF-kappaB p100-Färbung in HEK293T-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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