NEK9 (Phospho-T210) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen NEK9 (Phospho-T210) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an NEK9-Protein nur, wenn es an T210 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten um T210 des menschlichen NEK9-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 107 kD; Beobachtet: 120 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | KIAA1995; NEK8; NERCC; Serin/Threonin-Proteinkinase Nek9; Nercc1-Kinase; Niemals in Mitose A-verwandte Kinase 9; NimA-verwandte Proteinkinase 9; NimA-verwandte Kinase 8; Nek8 |
Gensymbol | NEK9 |
Entrez Gene | 91754 (Mensch); 217718(Maus) |
SwissProt | Q8TD19 (Mensch); Q8K1R7(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der NEK9-Expression (Phospho-T210) in Ganzzelllysaten von THP1 (A), HepG2 (B) und Hela (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 107 kD; beobachtete Bandengröße: 120 kD)

Immunhistochemische Analyse der NEK9 (Phospho-T210)-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der NEK9 (Phospho-T210)-Färbung in THP1-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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