NDUFA8 Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen NDUFA8 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an NDUFA8-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region von menschlichem NDUFA8 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 20 kD; Beobachtet: 20 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | NADH-Dehydrogenase [Ubichinon] 1 Alpha-Subkomplex-Untereinheit 8; Komplex I-19kD; CI-19kD; Komplex I-PGIV; CI-PGIV; NADH-Ubichinonoxidoreduktase 19 kDa-Untereinheit |
Gensymbol | NDUFA8 |
Entrez Gene | 4702 (Mensch); 68375(Maus) |
SwissProt | P51970 (Mensch); Q9DCJ5(Maus) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der NDUFA8-Expression in Ganzzelllysaten von HEK293T (A), Hela (B), A2780 (C), HepG2 (D), Mausmuskel (E), Mäuseniere (F), Rattenniere (G). (Vorhergesagte Bandengröße: 20 kD; beobachtete Bandengröße: 20 kD)

Immunhistochemische Analyse der NDUFA8-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der NDUFA8-Färbung in RAW264.7-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS 5-10 Minuten lang permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS 30 Minuten lang bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem AREX® Fluor 488 -konjugierten Sekundärantikörper (grün) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Phalloidin - AREX® Fluor 594 wurde zum Färben von Aktinfilamenten (rot) verwendet. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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