Polyklonaler mTOR-Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen mTOR |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an mTOR-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der C-term-Region von menschlichem mTOR umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 288 kD; Beobachtet: 289 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | FRAP; FRAP1; FRAP2; FLOSS1; RAPT1; Serin/Threonin-Proteinkinase mTOR; FK506-Bindungsprotein 12-Rapamycin-Komplex-assoziiertes Protein 1; FKBP12-Rapamycin-Komplex-assoziiertes Protein; Säugetierziel von Rapamycin; mTOR; Mechanistisches Ziel von Rapamycin; Rapamycin und FKBP12-Target 1; Rapamycin-Zielprotein 1 |
Gensymbol | MTOR |
Entrez Gene | 2475 (Mensch); 56717(Maus); 56718(Ratte) |
SwissProt | P42345 (Mensch); Q9JLN9(Maus); P42346(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der mTOR-Expression in Ganzzelllysaten von HepG2 (A), MCF7 (B), H9C2 (C) und AML12 (D). (Vorhergesagte Bandengröße: 288 kD; beobachtete Bandengröße: 289 kD)

Immunhistochemische Analyse der mTOR-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten bei menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der mTOR-Färbung in MCF7-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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