Polyklonaler MIF-Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen MIF |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an MIF-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der zentralen Region von menschlichem MIF umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 12 kD; Beobachtet: 12 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | GLIF; MMIF; Hemmfaktor für die Makrophagenmigration; MIF; Glykosylierungs--hemmender Faktor; GIF; L-Dopachrom-Isomerase; L-Dopachrom-Tautomerase; Phenylpyruvat-Tautomerase |
Gensymbol | MIF |
Entrez Gene | 4282 (Mensch); 17319(Maus); 81683(Ratte) |
SwissProt | P14174 (Mensch); P34884(Maus); P30904(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der MIF-Expression in Ganzzelllysaten von HEK293T (A), 22RV1 (B), Hela (C) und HepG2 (D). (Vorhergesagte Bandengröße: 12 kD; beobachtete Bandengröße: 12 kD)

Immunhistochemische Analyse der MIF-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten der Milz von Ratten. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde Tyramide-AREX® Fluor 594 (rot) verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit DAPI (blau) gegengefärbt.

Immunfluoreszenzanalyse der MIF-Färbung in Hela-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem AREX® Fluor 488 -konjugierten Sekundärantikörper (grün) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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