Polyklonaler Kaninchen-Antikörper Merlin (Phospho-S518).
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Merlin (Phospho-S518) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an Merlin-Protein nur, wenn es an S518 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten um S518 des menschlichen Merlin-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 69 kD; Beobachtet: 70 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | SCH; Merlin; Moesin-ezrin-radixin-ähnliches Protein; Neurofibromin-2; Schwannomerlin; Schwannomin |
Gensymbol | NF2 |
Entrez Gene | 4771 (Mensch); 18016(Maus); 25744(Ratte) |
SwissProt | P35240 (Mensch); P46662(Maus); Q63648(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Expression von Merlin (Phospho-S518) in Ganzzelllysaten von Hela (A) und A549 (B). (Vorhergesagte Bandengröße: 69 kD; beobachtete Bandengröße: 70 kD)

Immunhistochemische Analyse der Merlin-Färbung (Phospho-S518) in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt menschlicher Muskeln. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der Merlin (Phospho-S518)-Färbung in SGC7901-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem AREX® Fluor 488 -konjugierten Sekundärantikörper (grün) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Phalloidin - AREX® Fluor 594 wurde zum Färben von Aktinfilamenten (rot) verwendet. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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