Kir5.1 (Phospho-S416) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Kir5.1 (Phospho-S416) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an Kir5.1-Protein nur, wenn es an S416 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten um S416 des menschlichen Kir5.1-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 47 kD; Beobachtet: 55 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | KCNJ16; Einwärtsgleichrichter-Kaliumkanal 16; Einwärtsgleichrichter K(+) Kanal Kir5.1; Kaliumkanal nach innen korrigierend, Unterfamilie J, Mitglied 16 |
Gensymbol | KCNJ16 |
Entrez Gene | 3773 (Mensch); 16517(Maus) |
SwissProt | Q9NPI9 (Mensch); Q9Z307(Maus); P52191(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Kir5.1 (Phospho-S416)-Expression in Ganzzelllysaten von HEK293T (A), HuT78 (B), Mäusemilz (C) und Rattenmilz (D). (Vorhergesagte Bandengröße: 47 kD; beobachtete Bandengröße: 55 kD)

Immunhistochemische Analyse der Kir5.1 (Phospho-S416)-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt des menschlichen Gehirns. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der Kir5.1 (Phospho-S416)-Färbung in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem AREX® Fluor 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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