ILF3 monoklonaler Kaninchen-Antikörper (C3164)
Sicherheitsdatenblatt
Hauptmerkmale und Details
- Ziel:
- Quelle/Host:
- Reaktivität:
- Klonalität:
- Anwendungen:
- Konjugation:
- Lagerung:
-
Marke:
Produktdetails
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:100 |
IF/ICC | 1:50 - 1:100 |
IP | 1:10 - 1:50 |
Beschreibung | Monoklonaler Kaninchen-Antikörper gegen ILF3 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an ILF3-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | Ein synthetisches Peptid des menschlichen ILF3 |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 95 kD; Beobachtet: 95 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit in 50 mM Tris-Glycin (pH 7,4), 0,15 M NaCl, 50 % Glycerin, 0,01 % Natriumazid und 0,05 % BSA. |
Alternative Namen | DRBF; MPHOSPH4; NF90; Interleukin-Enhancer-Bindungsfaktor 3; Doppelsträngiges RNA-Bindungsprotein 76; DRBP76; M-Phase-Phosphoprotein 4; MPP4; Mit dsRNA assoziierter Kernfaktor; NFAR; Kernfaktor aktivierter T-Zellen 90 kDa; NF-AT-90; Translationskontrollprotein 80; TCP80 |
Gensymbol | ILF3 |
Entrez Gene | 3609 (Mensch); 84472(Ratte) |
SwissProt | Q12906 (Mensch); Q9JIL3(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.
Western-Blot-Analyse der ILF3-Expression in Ganzzelllysaten von Jurkat (A), C6 (B) und Hela (C). (Vorhergesagte Bandengröße: 95 kD; beobachtete Bandengröße: 95 kD)
Immunhistochemische Analyse der ILF3-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Lungenkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.
Immunfluoreszenzanalyse der ILF3-Färbung in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem AREX® Fluor 488 -konjugierten Sekundärantikörper (grün) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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