Polyklonaler Kaninchen-Antikörper IGF2BP1
WB | 1:500 - 1:2000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen IGF2BP1 |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an IGF2BP1-Protein. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Peptid von menschlichem IGF2BP1 |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 48; Beobachtet: 71 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | CRDBP; VICKZ1; ZBP1; Insulin-ähnlicher Wachstumsfaktor 2 mRNA-bindendes Protein 1; IGF2 mRNA-bindendes Protein 1; IMP-1; IMP1; Determinante der kodierenden Region - Bindungsprotein; CRD-BP; IGF-II mRNA-bindendes Protein 1; VICKZ-Familienmitglied 1; Postleitzahl-Bindungsprotein 1; ZBP-1 |
Gensymbol | IGF2BP1 |
Entrez Gene | 10642 (Mensch); 140486(Maus); 303477(Ratte) |
SwissProt | Q9NZI8(Mensch); O88477(Maus); Q8CGX0(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der IGF2BP1-Expression in Ganzzelllysaten von HL60 (A), K562 (B), NIH3T3 (C) und Mäuseleber (D). (Vorhergesagte Bandengröße: 48; 63 kD; beobachtete Bandengröße: 71 kD)

Immunhistochemische Analyse der IGF2BP1-Färbung in einem mit Formalin fixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitt des menschlichen Magens. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der IGF2BP1-Färbung in U2OS-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem AREX® Fluor 488 -konjugierten Sekundärantikörper (grün) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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