hnRNP D0 (Phospho-S83) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen hnRNP D0 (Phospho-S83) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an hnRNP-D0-Protein nur, wenn es an S83 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten um S83 des menschlichen hnRNP-D0-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 38 kD; Beobachtet: 38 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | AUF1; HNRPD; Heterogenes nukleäres Ribonukleoprotein D0; hnRNP D0; AU-reiche Element-RNA-bindendes Protein 1 |
Gensymbol | HNRNPD |
Entrez Gene | 3184 (Mensch); 11991(Maus); 79256(Ratte) |
SwissProt | Q14103 (Mensch); Q60668(Maus); Q9JJ54(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der hnRNP D0 (Phospho-S83)-Expression in Ganzzelllysaten von THP1 (A), SGC7901 (B), Mäuselunge (C) und Rattenlunge (D). (Vorhergesagte Bandengröße: 38 kD; beobachtete Bandengröße: 38 kD)

Immunhistochemische Analyse der hnRNP D0 (Phospho-S83)-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Lungenkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der hnRNP D0 (Phospho-S83)-Färbung in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem Alexa Fluor 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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