hnRNP A2/B1 polyklonaler Kaninchen-Antikörper

Sicherheitsdatenblatt

Hauptmerkmale und Details

Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen hnRNP A2/B1

Ziel: hnRNP A2/B1
Quelle/Host: Kaninchen
Reaktivität: Mensch, Maus, Ratte, Hund, Affe, Schwein
Klonalität: Polyklonal
Anwendungen: WB, IHC, IF/ICC
Konjugation: Unkonjugiert
Lagerung: bei -20°C

Marke:

KAT.-NR. : APA09320

US$ Bitte wählen

Größe:

50μL 100 μL

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Produktdetails

Hintergrund

Heterogenes nukleares Ribonukleoprotein (hnRNP), das sich mit entstehenden prä-mRNAs verbindet und diese in hnRNP-Partikel verpackt. Die Anordnung der hnRNP-Partikel auf entstehender hnRNA ist nicht zufällig und sequenzabhängig und dient dazu, die Transkripte zu kondensieren und zu stabilisieren und Verwirrung und Verknotung zu minimieren. Die Verpackung spielt eine Rolle bei verschiedenen Prozessen wie Transkription, Prä-mRNA-Verarbeitung, RNA-Kernexport, subzellulärer Lokalisierung, mRNA-Translation und Stabilität reifer mRNAs, die sich mit entstehenden Prä-mRNAs verbinden und diese in hnRNP-Partikel verpacken. Die Anordnung der hnRNP-Partikel auf entstehender hnRNA ist nicht zufällig und sequenzabhängig und dient dazu, die Transkripte zu kondensieren und zu stabilisieren und Verwirrung und Verknotung zu minimieren.

Bewerbung

Um eine optimale Testleistung sicherzustellen, empfiehlt AREX die Durchführung einer auf jedes Testsystem zugeschnittenen Reagenzientitration, um optimale Nachweisergebnisse zu erzielen.

WB	1:500 - 1:1000
IHC	1:100 - 1:200
IF/ICC	1:100 - 1:500

*Ergebnisse sind probenspezifisch. Bitte beziehen Sie sich als Referenz auf Ihre lokalen Testbedingungen und Testparameter.

Übersicht

Beschreibung	Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen hnRNP A2/B1
Spezifität	Erkennt endogene Mengen an hnRNP A2/B1-Protein.
Antikörpertyp	Primärer Antikörper
Immunogen	KLH-konjugiertes synthetisches Peptid, das eine Sequenz innerhalb der N-term-Region des menschlichen hnRNP A2/B1 umfasst. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt.
Reinigung	Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt.
Molekulargewicht	Voraussichtlich: 37 kD; Beobachtet: 36 kD
Form/Puffer	Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid.
Alternative Namen	HNRPA2B1; Heterogene nukleäre Ribonukleoproteine A2/B1; hnRNP A2/B1
Gensymbol	HNRNPA2B1
Entrez Gene	3181 (Mensch); 102642938; 53379(Maus); 362361(Ratte)
SwissProt	P22626 (Mensch); O88569(Maus); A7VJC2(Ratte)

*AREX optimiert unsere Produkte kontinuierlich. Der Inhalt der Webseite spiegelt möglicherweise nicht die neuesten Aktualisierungen wider. Für Anfragen wenden Sie sich bitte an info@arexbio.com oder Ihren lokalen Händler.
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Daten

Western-Blot-Analyse der hnRNP-A2/B1-Expression in A549- (A) und MCF7-Ganzzelllysaten (B). (Vorhergesagte Bandengröße: 37 kD; beobachtete Bandengröße: 36 kD)

Immunhistochemische Analyse der hnRNP A2/B1-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der hnRNP A2/B1-Färbung in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.

Lagerung

Kurzfristig bei 4°C lagern. Bei längerer Lagerung bei -20 °C lagern und Einfrier-/Auftauzyklen vermeiden.

Hinweis

Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung in diagnostischen Verfahren geeignet.

FAQs

Was sind die wichtigsten Arten von Forschungsantikörpern und wie unterscheiden sie sich?

Forschungsantikörper werden hauptsächlich in monoklonale Antikörper und polyklonale Antikörper unterteilt. Monoklonale Antikörper bieten in der Regel eine höhere Spezifität und eine bessere Chargenkonsistenz, während polyklonale Antikörper oft eine stärkere Affinität bieten, aber möglicherweise größere Unterschiede zwischen den Chargen aufweisen. Die Wahl hängt von Ihren spezifischen experimentellen Anforderungen ab.

Wie kann ich feststellen, ob ein Forschungsantikörper für mein Experiment geeignet ist?

Es wird empfohlen, das Produktdatenblatt sorgfältig auf validierte Anwendungen, Speziesreaktivität, empfohlene Verdünnungen und veröffentlichte Referenzen zu prüfen. Bei neuen Antikörpern ist in der Regel die Durchführung einer Validierung im kleinen Maßstab mit positiven Kontrollproben hilfreich.

Kann eine unsachgemäße Lagerung von Forschungsantikörpern die Versuchsergebnisse beeinflussen?

Ja. Antikörper reagieren empfindlich auf Temperatur, wiederholte Einfrier-/Auftauzyklen und Kontamination. Eine unsachgemäße Lagerung kann zu verminderter Aktivität, erhöhtem Hintergrund oder schwächeren Signalen führen. Befolgen Sie am besten die Lagerungshinweise im Produktdatenblatt.

Warum funktioniert die im Datenblatt empfohlene Verdünnung in meinem Experiment nicht?

Die empfohlene Verdünnung richtet sich nach den Testbedingungen des Lieferanten. Faktoren wie Probentyp, Fixierungsmethode und Nachweissystem in Ihrem Labor können die optimale Arbeitskonzentration beeinflussen. Oft ist es notwendig, eine Verdünnungsreihenoptimierung im eigenen System durchzuführen.

Welche Vorsichtsmaßnahmen sollte ich treffen, wenn ich einen neu erworbenen Forschungsantikörper zum ersten Mal verwende?

Es empfiehlt sich, den Antikörper (insbesondere konzentrierte oder lyophilisierte) kurz zu zentrifugieren und anschließend einen kleinen Pilotversuch unter den empfohlenen Bedingungen durchzuführen. Auch die Aufzeichnung der Chargennummer und des Verwendungsdatums ist für die zukünftige Nachverfolgung hilfreich.

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