Histon H3 (Phospho-T6) polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:1000 - 1:2000 |
IHC | 1:100 - 1:200 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Histon H3 (Phospho-T6) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an Histon-H3-Protein nur, wenn es bei T6 phosphoryliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches Phosphopeptid, das den Resten entspricht, die T6 des menschlichen Histon-H3-Proteins umgeben. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 15 kD; Beobachtet: 17 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | HIST1H3A; H3FA; HIST1H3B; H3FL; HIST1H3C; H3FC; HIST1H3D; H3FB; HIST1H3E; H3FD; HIST1H3F; H3FI; HIST1H3G; H3FH; HIST1H3H; H3FK; HIST1H3I; H3FF; HIST1H3J; H3FJ; Histon H3.1; Histon H3/a; Histon H3/b; Histon H3/c; Histon H3/d; Histon H3/f; Histon H3/h; Histon H3/i; Histon H3/j; Histon H3/k; Histon H3/l; HIST2H3A; HIST2H3C; H3F2; H3FM; HIST2H3D; Histon H3.2; Histon H3/m; Histon H3/o; H3F3A; H3.3A; H3F3; PP781; H3F3B; H3.3B; Histon H3.3 |
Gensymbol | HIST1H3A; HIST1H3B; HIST1H3C; HIST1H3D; HIST1H3E; HIST1H3F; HIST1H3G; HIST1H3H; HIST1H3I; HIST1H3J; HIST2H3A; HIST2H3C; HIST2H3D; H3F3A; H3F3B |
Entrez Gene | 8350; 8351; 8352; 8353; 8354; 8355; 8356; 8357; 8358; 8968 (Mensch); 319152; 15077; 15078(Maus); 291159; 100361558(Ratte) |
SwissProt | P68431; Q71DI3; P84243 (Mensch); P68433; P84228; P84244(Maus); Q6LED0; P84245(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Histon H3 (Phospho-T6)-Expression in Hela (A)-Ganzzelllysaten. (Vorhergesagte Bandengröße: 15 kD; beobachtete Bandengröße: 17 kD)

Immunhistochemische Analyse der Histon H3 (Phospho-T6)-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.
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