Histon H3 (MonoMethyl-R26) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:2000 |
IHC | 1:50 - 1:200 |
IF/ICC | 1:50 - 1:200 |
IP | 1:20 - 1:50 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Histon H3 (MonoMethyl-R26) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an Histon-H3-Protein nur, wenn es bei R26 monomethyliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches monomethyliertes Peptid, das den Resten um R26 des menschlichen Histon-H3-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 15 kD; Beobachtet: 17 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | H3FT; Histon H3.1t; H3/t; H3t; H3/g |
Gensymbol | HIST3H3 |
Entrez Gene | 8290 (Mensch) |
SwissProt | Q16695 (Mensch) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Histon H3 (MonoMethyl-R26)-Expression in Hela (A)-Ganzzelllysaten. (Vorhergesagte Bandengröße: 15 kD; beobachtete Bandengröße: 17 kD)

Immunhistochemische Analyse der Histon H3 (MonoMethyl-R26)-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten des menschlichen Dickdarms. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.

Immunfluoreszenzanalyse der Histon H3 (MonoMethyl-R26)-Färbung in HEK293T-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem Primärantikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer befeuchteten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.
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