Histon H3 (Acetyl-K23) polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IF/ICC | 1:100 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Histon H3 (Acetyl-K23) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an Histon-H3-Protein nur, wenn es an K23 acetyliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches acetyliertes Peptid, das den Resten um K23 des menschlichen Histon-H3-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 15 kD; Beobachtet: 17 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | HIST1H3A; H3FA; HIST1H3B; H3FL; HIST1H3C; H3FC; HIST1H3D; H3FB; HIST1H3E; H3FD; HIST1H3F; H3FI; HIST1H3G; H3FH; HIST1H3H; H3FK; HIST1H3I; H3FF; HIST1H3J; H3FJ; Histon H3.1; Histon H3/a; Histon H3/b; Histon H3/c; Histon H3/d; Histon H3/f; Histon H3/h; Histon H3/i; Histon H3/j; Histon H3/k; Histon H3/l; HIST2H3A; HIST2H3C; H3F2; H3FM; HIST2H3D; Histon H3.2; Histon H3/m; Histon H3/o; H3F3A; H3.3A; H3F3; PP781; H3F3B; H3.3B; Histon H3.3 |
Gensymbol | HIST1H3A; HIST1H3B; HIST1H3C; HIST1H3D; HIST1H3E; HIST1H3F; HIST1H3G; HIST1H3H; HIST1H3I; HIST1H3J; HIST2H3A; HIST2H3C; HIST2H3D; H3F3A; H3F3B |
Entrez Gene | 8350; 8351; 8352; 8353; 8354; 8355; 8356; 8357; 8358; 8968; 126961; 333932; 653604; 3020; 3021 (Mensch); 319152; 15077; 15078(Maus); 291159; 100361558(Ratte) |
SwissProt | P68431; Q71DI3; P84243 (Mensch); P68433; P84228; P84244(Maus); Q6LED0; P84245(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Histon-H3-Expression (Acetyl-K23) in HEK293T- (A) und Hela-Ganzzelllysaten (B). (Vorhergesagte Bandengröße: 15 kD; beobachtete Bandengröße: 17 kD)

Immunfluoreszenzanalyse der Histon H3 (Acetyl-K23)-Färbung in HeLa-Zellen. Formalinfixierte Zellen wurden mit 0,1 % Triton X-100 in TBS für 5-10 Minuten permeabilisiert und mit 3 % BSA-PBS für 30 Minuten bei Raumtemperatur blockiert. Die Zellen wurden mit dem primären Antikörper in 3 % BSA-PBS sondiert und über Nacht bei 4 °C in einer versteckten Kammer inkubiert. Die Zellen wurden mit PBST gewaschen und mit einem DyLight 594-konjugierten Sekundärantikörper (rot) in PBS bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert. Zur Färbung der Zellkerne (blau) wurde DAPI verwendet.
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