Histon H2A (Acetyl-K15) Polyklonaler Kaninchen-Antikörper
WB | 1:500 - 1:1000 |
IHC | 1:200 - 1:500 |
Beschreibung | Polyklonaler Kaninchen-Antikörper gegen Histon H2A (Acetyl-K15) |
Spezifität | Erkennt endogene Mengen an Histon-H2A-Protein nur, wenn es an K15 acetyliert ist. |
Antikörpertyp | Primärer Antikörper |
Immunogen | KLH-konjugiertes synthetisches acetyliertes Peptid, das Resten um K15 des menschlichen Histon-H2A-Proteins entspricht. Die genaue Reihenfolge ist urheberrechtlich geschützt. |
Reinigung | Der Antikörper wurde durch Immunogenaffinitätschromatographie gereinigt. |
Molekulargewicht | Voraussichtlich: 14 kD; Beobachtet: 14 kD |
Form/Puffer | Flüssigkeit aus 0,42 % Kaliumphosphat, 0,87 % Natriumchlorid, pH 7,3, 30 % Glycerin und 0,01 % Natriumazid. |
Alternative Namen | HIST1H1A; H1F1; Histon H1.1; Histon H1a; HIST1H1C; H1F2; Histon H1.2; Histon H1c; Histon H1d; Histon H1s-1; HIST1H1D; H1F3; Histon H1.3; Histon H1c; Histon H1s-2; HIST1H1E; H1F4; Histon H1.4; Histon H1b; Histon H1s-4 |
Gensymbol | HIST1H2AG; HIST1H2AI; HIST1H2AK; HIST1H2AL; HIST1H2AM; HIST2H2AA3; HIST2H2AA4; HIST3H2A |
Entrez Gene | 8329; 8330; 8332; 8336; 8969; 723790; 8337; 92815 (Mensch); 319164; 15267; 319162(Maus); 365877; 64646(Ratte) |
SwissProt | P0C0S8; Q6FI13; Q7L7L0(Mensch); P22752; Q6GSS7; Q8BFU2(Maus); P02262; P0CC09; Q4FZT6(Ratte) |
*Klonnummer, Reaktivität, Quelle/Host und Klonalität finden Sie oben im Abschnitt Produktname und Hauptfunktionen.

Western-Blot-Analyse der Expression von Histon H2A (Acetyl-K15) in mit Hela TSA behandelten (A) Ganzzelllysaten. (Vorhergesagte Bandengröße: 14 kD; beobachtete Bandengröße: 14 kD)

Immunhistochemische Analyse der Histon H2A (Acetyl-K15)-Färbung in formalinfixierten, in Paraffin eingebetteten Gewebeschnitten von menschlichem Brustkrebs. Der Schnitt wurde mittels wärmevermittelter Antigengewinnung mit Natriumcitratpuffer (pH 6,0) vorbehandelt. Anschließend wurde der Schnitt mit dem Antikörper bei Raumtemperatur inkubiert und mithilfe eines HRP-konjugierten Kompaktpolymersystems nachgewiesen. Als Chromogen wurde DAB verwendet. Anschließend wurde der Schnitt mit Hämatoxylin gegengefärbt und mit DPX fixiert.
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